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小鼠胚胎干细胞培养实验步骤



以下是根据NIH老年病研究所提供的英文的R1胚胎干细胞培养protocol整理而成。根据经验作部分修改。


1、一般培养:保持胚胎干细胞处于未分化状态

      培养基      细胞复苏      冻存细胞      明胶包被      细胞传代


2 、体外分化

      培养基      包被有多聚鸟氨酸/纤维结合蛋白的培养板(使用或不使用盖玻片)


体外分化方法

      注:以下培养针对于小鼠的R1胚胎干细胞系,其它胚胎干细胞的培养可以参考。不过人的胚胎干细胞培养不可以采用下面的protocol,需要用专用的protocol和培养基。


一般培养


      维持ES细胞处于未分化状态

      ES细胞培养用含有LIF(白血病抑制因子)和Feed细胞的培养基(高糖)来阻止细胞的分化。为细胞提供包被有0.1%明胶的平板作为粘附细胞的基质。建议每2-3天从达到80%-90%融合的平板按1:8的比率传代细胞一次,细胞传代以后,在将细胞接种在0.1%明胶包被的培养皿之前,通过预先将细胞接种在没有经过包被的组织培养板2个小时,使分化细胞粘附,从而将分化和未分化细胞分开。将细胞全程置于37℃,5%CO2,100%湿度条件下培养。如果在Feed细胞,那么就需要采用MMC进行处理,抑制Feed细胞增殖,但仍然能保持其分泌LIF因子的活性。下文中暂不提及Feed细胞。Feed细胞可以来源于STO细胞或原代胚胎成纤维细胞。


培养基


ES:


      配制一20×不含DMEM,HS,LIF的溶液(该溶液也能用于EB培养基--见下文)。分装在50ml 离心管中,(稀释为2×,每管42ml),贮存在-20℃。通过将21ml该溶液,HS和LIF加入450ml DMEM中制备培养基,0.22 μm滤膜过滤。贮存于4℃,时间不要超过2周。贮存液       DMEM(高糖)       马血清(HS)       L-谷氨酰胺(200mM)       MEM NEAA(10mM)       HEPES(1M)       β-巯基乙醇(55Mm)       PEST       LIF


复苏细胞


      细胞被冻存在10%二甲基亚砜(DMSO)中防止结晶的形成,结晶的形成会损害细胞。然而,二甲基亚砜对细胞有毒性,快速的进行细胞复苏是很重要的。


步骤:      

      1、从液氮中取出一管细胞;      

      2、将冻存管置于37℃水浴中2分钟(或放到管内溶液恰好完全溶解);      

      3、将细胞转移到一15ml Falcon管中;      

      4、加入5ml ES培养基(用培养基冲洗冻存管);      

      5、离心3分钟;      

      6、弃上清,用2ml ES培养基重悬细胞,至少吹打10次;      

      7、接种在明胶包被(见下文)的6孔或6cm组织培养皿;      

      8、孵育。


冻存细胞


      冻存液:90%HS和10%DMSO


步骤:      

      1、1×PBS洗细胞并留少许PBS在培养皿内;      

      2、用细胞刮刀收集细胞;      

      3、将细胞转入15ml 离心管管内并离心3分钟;      

      4、弃去上清并将细胞重悬于冷的冻存液中(10 cm的培养皿用2ml,15cm的培养皿用6-7ml。)      

      5、分装于冻存管内,每管1ml;      

      6、置-80℃过夜,第二天移入液氮。


Geltin(明胶)包被


      准备500ml 0.1%geltin溶液      

      1、将0.5 g明胶溶解在500ml无钙镁的PBS中(50-65℃水浴15~30分钟)。      

      2、最好在溶液没有冷却的情况下通过0.22 μm滤膜过滤,贮存在4℃。


包被培养板或培养皿      


      1、加入足量的明胶溶液覆盖培养平面(15 cm培养皿加2ml,10 cm培养皿加0.5~1 ml,溶液的量并不重要,只要能完全覆盖培养表面就行了。);      

      2、置室温30分钟;      

      3、去除明胶溶液,将培养板贮存在包装袋中室温放置,最好将板子平放或倒扣,以免明胶污染盖子和流出培养板。


细胞传代


      建议每2天传代细胞一次,过度生长的细胞会降低细胞的自然分化率,我们建立了一种纯化方法来去除分化细胞,在将细胞接种在明胶包被的培养板上之前,通过将分化细胞黏附在没有包被的组织培养板上去除分化细胞。纯化步骤包含在下面的方法中。

      1、去除培养液;     

      2、无钙镁PBS(Gibco)洗涤;      

      3、加入胰酶EDTA(Gibco)。37℃孵育5分钟。      

      4、加入ES。培养基使胰酶失活;      

      5、将细胞转入15 ml离心管中离心3min;      

      6、去除上清,将细胞重悬于2 ml ES培养基,至少吹打10-20次。如果加入培养基的量较少会比较容易将细胞团弄散分开。ES细胞有聚集成团的倾向,传代过程中仔细将细胞弄散分开很重要。这样可能会减少细胞的自然分化。      

      7、将细胞接种在没有包被的组织培养皿中(使用和一开始同样规格的培养皿)放入温箱2小时(分化细胞在该时间内将黏附,而ES细胞仍将保持悬浮);      

      8、将含有细胞的培养基转入geltin包被的组织培养皿。吹打以确保细胞被分散开(前面已经提到--ES细胞有聚集成团的倾向)      

      9、建议按1:4-1:10的比率传代 (ATCC)


      保持细胞的传代比率很重要,以我们的经验,1:8的比率是好的,可以使细胞的自然分化降到最低。当你使用不同规格的培养板进行细胞传代可以使用表1来计算传代比率。


      (本文转载:丁香通

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