TAL效应因子（TAL effector, TALE）具有序列特异性结合能力，通过将FokI核酸酶与一段人造TALE连接起来，形成了一类具有特异性基因组编辑功能的强大工具，即TALEN。利用 TALEN 技术实现基因组定点修饰的流程包括以下几个步骤。

       第一步，从选定的目标序列中寻找合适的 TALE 候选靶位点，选择的 DNA 序列 5' 端第一个碱基最好为 T。

       为了能快速获得合适的 TALE 候选靶位点，目前已经建立了多个在线软件：

       (1) https://boglab.plp.iastate.edu；

       (2)http://idtale.kaust.edu.sa；

       (3) http://zifit.partners.org/ZiFiT ;

       (4)http://bloglabx.plp.iastae.edu/TALENT/help.php。

       第二步， 获取针对 靶 序 列 的 特 异TALE 蛋白。这一步是 TALEN 技术最为重要和复杂的一步，目前已经有多篇文章报道了改进后的获取 TALEN 的方法 [18-22]。

       第三步，选择合适的 FokI结构域，利用分子生物学的方法把 TALE 和 FokI组装在一起构建完整的 TALEN 蛋白。

       第四步，将完整的 TALEN 引入细胞进行基因组定点修饰操作。

       第五步，筛选阳性克隆，评价效果。

       以上并不是每个 TALEN 必经的步骤，有的会在第三步与第四步之间加入酵母双杂交等评估，首先确定其活性，然后再用于实验。

实验方法：

       根 据TALEN 靶点选择的原则和文献的报道，针对 GeneA的第一外显子设计了一对靶点。先要分别构建出识别左、右半位点的 TALE重复序列载体，再与 pCS2 载体连接，形成最终的表达载体。将 TALE基本单元模块载体质粒转化至感受态细胞 TOP 菌种中;大量摇活含有质粒的大肠杆菌后，采用天根的质粒小提试剂盒提取质粒;将质粒经酶切后( SpeI、Nhe I、Hind III)进行回收、转化、连接反应，通过菌液 PCＲ 筛选出连接成功的质粒后，进入下一轮反应;经过几轮酶切、切胶回收及连接反应，直至完成所需要的两侧半位点的 TALE 重复序列，其中每轮的连接后都需要进行测序确认;再将 TALE 重复序列与 pCS2 载体连接，构建出最终的 pCS2-TALEN 表达载体质粒，酶切检测片段连接情况后，采用 SP6 测序确认。